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10.3864/j.issn.0578-1752.2015.16.016

采用特异性探针药物法测定双峰驼CYP3A酶活性

引用
【目的】探究双峰驼 CYP3A 酶体外活性及其对外源性药物代谢的影响。【方法】将双峰驼禁食过夜12 h,颈静脉放血处死后,立即于肝门静脉处采集块状肝脏组织,洗去血污称重匀浆后,采用 Ca2+沉淀法制备双峰驼肝微粒体,并通过 BCA法测定其蛋白含量。同时优化双峰驼肝微粒孵育体系,取不同浓度的双峰驼肝微粒体蛋白悬液(0.016、0.031、0.063、0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 mg·mL-1)、不同浓度的探针药物咪达唑仑(MDZ)(7.813、15.625、31.250、62.500、125、250、500、1000μg·mL-1)分别加入到孵育体系中,37℃预孵育5 min后,加入NADPH溶液后再孵育不同时间(0、2、5、10、15、20、25、30 min)。待反应完全后加入冰冷的甲醇和地西泮(DZP)溶液,涡旋混匀,800μL 全部混合液体经14500 r/min 离心20 min 后,取20μL 上清液进行高效液相色谱紫外检测(HPLC-UV),确定最适底物浓度、最适酶浓度以及最适孵育时间。分别取浓度为7.813、15.625、31.250、62.500、125、250、500、1000μg·mL-1 MDZ 探针药物溶液20μL 与双峰驼肝微粒体共同孵育15 min 后,以混有内标 DZP 的冰冷甲醇终止反应,采用高效液相色谱紫外检测法测定反应产物1'-羟基咪达唑仑(1'-OHMDZ)的动态含量,计算出部分药物动力学参数。色谱条件:Sigma-Aldrich/Supelco Discovery C18色谱柱(150 mm×4.6 mm,5μm);流动相为V(乙腈)﹕V(0.01 mol·L-1 PBS缓冲液)=40﹕60;等浓度洗脱20 min;检测波长为254 nm;流速为0.8 mL·min-1;柱温为30℃;进样量为20μL。【结果】使用 Ca2+沉淀法制备的双峰驼肝微粒体保持了酶的良好活性,能满足后续体外药物代谢试验的基本要求,经BCA法测定其蛋白含量为(1.936±0.052) mg·mL-1。双峰驼肝微粒体蛋白悬液、探针药物 MDZ、PBS 缓冲液、MgCl2溶液以及 NADPH 溶液构成双峰驼肝微粒体孵育体系,随着孵育时间的延长,酶和底物进一步反应,当MDZ浓度为125μg·mL-1(终浓度为7.073 nmol·mL-1),肝微粒体浓度为2.000 mg·mL-1(终浓度为0.050 mg·mL-1)时,孵育15 min,酶和底物的结合最紧密,并呈现出饱和的状态,故确定其终浓度和时间为最适浓度和最佳孵育时间。经HPLC-UV法测定,1'-OHMDZ、MDZ和DZP的出峰保留时间分别为6.710、11.383和15.263 min,各成分色谱峰分离良好,且不受肝微粒体孵育体系中其他干扰峰的影响。HPLC 检测方法的精密度、稳定性及回收率的试验结果均符合色谱测定的基本要求,即成功建立了准确、灵敏、可靠、重现性好的双峰驼CYP3A酶特异性探针药物的检测方法。以底物 MDZ浓度和反应产物1'-OHMDZ生成速率进行 Lineweaver-Burk双倒数作图,分别计算出最大反应速度Vmax 和米氏常数 Km。经 Origin Pro8.6软件进行线性回归分析得到最大反应速度 Vmax 为(0.380±0.028)nmol·mg-1·min-1,米氏常数 Km为(9.603±3.229)nmol·mL-1,以此体现酶和底物的反应情况,并对双峰驼CYP3A酶的活性进行了间接测定。【结论】成功建立了跟踪检测CYP3A酶的特异性探针药物MDZ及其代谢产物浓度的高效液相色谱紫外检测方法。MDZ在体内经CYP3A酶的特异性氧化代谢后主要生成1'-OHMDZ,本文以MDZ的代谢产物1'-OHMDZ的生成速率为检测指标,首次对双峰驼CYP3A酶的体外活性及酶与底物的相互作用特点进行了研究。

双峰驼、CYP3A酶、高效液相色谱法、探针药物

R969.1;R285.5;R733.71

国家自然科学基金31260623

2015-09-23(万方平台首次上网日期,不代表论文的发表时间)

共9页

3266-3274

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0578-1752

11-1328/S

2015,(16)

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